NIHMSID: NIHMS459458

Josef Pleticha

^a Департаменты анестезиологии и онкологии, США, 55, Мэйо, США.

Тимоти П. Маус

^b Отделение радиологии, Клиника Майо, 200 First Street SW, Рочестер 55905, Миннесота, США

Кристиан Дженг-Сингх

^a Отделения анестезиологии и онкологии, Клиника Майо, 200 First Street SW, Рочестер, Миннесота 55905, США

Майкл П.Marsh

^c Отделение неврологической хирургии, клиника Майо, 200 First Street SW, Rochester 55905, MN, USA

Fadi Al-Saiegh

^a Отделения анестезиологии и онкологии, клиника Mayo Clinic, 200 First Street SW, Рочестер, Миннесота 55905, США

Джоди А. Кристнер

^b Отделение радиологии, клиника Майо, 200 First Street SW, Рочестер 55905, Миннесота, США

Кендалл Х. Ли

^c Отделение неврологической хирургии , Mayo Clinic, 200 First Street SW, Рочестер 55905, Миннесота, США

Андреас С.Beutler

^a Отделения анестезиологии и онкологии, клиника Майо, 200 First Street SW, Рочестер, Миннесота 55905, США

^a Отделения анестезиологии и онкологии, клиника Майо, 200 First Street SW, Рочестер, Миннесота 55905 США

^b Отделение радиологии, клиника Майо, 200 First Street SW, Рочестер 55905, Миннесота, США

^c Отделение неврологической хирургии, Mayo Clinic, 200 First Street SW, Рочестер 55905, Миннесота, США

Abstract

Интратекальное (ИТ) введение — важный путь доставки лекарств. Его моделирование на крупных видах животных является критическим шагом. Хотя домашние свиньи в настоящее время являются предпочтительным видом в доклинической фармакологии, не было разработано проверенных минимально инвазивных методов доставки агентов в ИТ-пространство свиней. В то время как «слепая» люмбальная пункция (LP) позволяет отобрать пробу спинномозговой жидкости (CSF), она ненадежна для доставки лекарств свиньям.С помощью компьютерной томографии (КТ) мы определили основные анатомические причины. Спинной мозг свиньи был визуализирован, оканчивающийся на уровне S2-S3. В поясничной области содержалось лишь небольшое количество спинномозговой жидкости, визуализированной в боковых углублениях. Выявленные дополнительные анатомические ограничения включали окостенение срединных связок; перекрытие пластинки с небольшими межслойными промежутками; и большой объем эпидуральной жировой ткани. Принимая во внимание анатомию КТ свиньи, мы разработали технику инъекции, называемую латеральной LP (LLP), которая использует предварительное планирование пути иглы и мониторинг прогресса ИТ-инъекции.Ключевыми особенностями процедуры LLP были выбор позвоночного уровня без перекрытия пластинки или окостенения позвоночных связок; траектория иглы, пересекающая среднюю линию; и вход в ИТ-пространство в его боковой нише. Эффективность доставки ИТ была подтверждена инъекцией контрастного вещества, в результате чего была получена миелограмма КТ. LLP представляет собой безопасный и надежный метод доставки агентов в ИТ-пространство поясничного отдела свиньи, который может быть легко реализован любой лабораторией, имеющей доступ к оборудованию КТ, и поэтому является привлекательной моделью на крупных животных для доклинических исследований ИТ-терапии.

Ключевые слова: люмбальная пункция, свинья, свинья, компьютерная томография, интратекальный

1. Введение

Интратекальная (ИТ) доставка является важным путем введения лекарств, когда обход гематоэнцефалического барьера или нацеливание на спинной мозг является основным фармакологическая цель. Введение IT-препаратов может быть достигнуто у людей с помощью люмбальной пункции (LP) ¹ , рутинной процедуры в клинических условиях. ЛП может безопасно выполняться у постели больного, не требует специального оборудования и используется в диагностике и лечении на протяжении многих десятилетий.У людей процедура проста, так как спинной мозг человека оканчивается на уровне L1 — L2. Более дистальная часть текального мешка содержит только спинномозговые нервы, образующие cauda equina и тонкое продолжение conus medullaris , дающее начало концевой нити . Напротив, у большинства других млекопитающих это относительно пустое пространство, заполненное спинномозговой жидкостью, отсутствует, и их спинной мозг продолжается дистально до нижнего поясничного или крестцового уровня (Watson et al., 2008). Это анатомическое различие представляет собой серьезную проблему при моделировании LP в экспериментальных условиях.

Ввиду этого препятствия на грызунах были разработаны два основных подхода к нацеливанию на ИТ-пространство, которые впоследствии были перенесены на более крупные виды. Первый метод включает введение катетера через атланто-затылочную мембрану с последующим продвижением его дистально вдоль субарахноидального пространства (Malkmus and Yaksh, 2004; Pogatzki et al., 2000; Rijsdijk et al., 2012; Storkson et al., 1996; Якш и Руди, 1976). Хотя этот подход обеспечивает интратекальное размещение катетера под прямым визуальным контролем, продвижение катетера вдоль основной части спинного мозга создает риск повреждения выступающих корешков спинного мозга и, как следствие, неврологического нарушения. Второй метод заключается в прямой пункции твердой мозговой оболочки на желаемом уровне позвоночника (De la Calle and Paino, 2002; Hylden and Wilcox, 1980; Mestre et al., 1994). Это позволяет напрямую проникать в поясничное субарахноидальное пространство, аналогично LP у человека.Однако крошечный размер интратекального пространства, которое, в отличие от человека, заполнено спинным мозгом на всем протяжении до крестцового уровня, затрудняет правильное размещение иглы. Смещение положения иглы всего на 0,5 мм может привести к повреждению спинного мозга или смещению кончика иглы за пределы ИТ-пространства.

Домашние свиньи — один из крупных видов животных, наиболее часто используемых в медицинских исследованиях. Не только его размер сравним с человеческим, но и у обоих видов есть много общего в сердечно-сосудистой и иммунной системах.Таким образом, свиньи являются опорой в смежных областях исследований (Fairbairn et al., 2011; McCall et al., 2012; Meurens et al., 2012; Thim, 2010;). Обширный опыт научного сообщества в сочетании с относительно низкой стоимостью и низким риском передачи заболеваний делает свиней привлекательной альтернативой другим часто используемым крупным видам животных, таким как животные-компаньоны (собаки и кошки) или нечеловеческие приматы. На сегодняшний день нет исследований, в которых строго изучалась бы анатомия позвоночника свиней, имеющая отношение к LP.Хотя LP выполняется в ветеринарной практике у этого вида, описанные выше недостатки делают этот метод непригодным для исследовательских приложений, где требуется безопасный и подтвержденный доступ к ИТ-пространству. Кроме того, катетеризация ИТ через большую цистерну технически затруднена у свиней из-за толстого мышечного слоя, покрывающего шейный отдел позвоночника (McCracken et al., 2006). Следовательно, не существует строгих неинвазивных методов, позволяющих вводить агенты в ИТ в поясничный отдел свиней.

Чтобы решить проблему отсутствия подходящей модели, мы использовали подход на основе компьютерной томографии (КТ), который клинически используется при различных нейрорадиологических вмешательствах на позвоночнике, таких как LP у пациентов с деформациями позвоночника, трансфораминальные или интерламинарные эпидуральные инъекции и позвоночник. процедуры биопсии (Wagner et al., 2003). Технологический опыт, накопленный в клинических условиях, был использован в настоящем исследовании для разработки новой LP-подобной техники на свиньях.Здесь мы описываем, как использовать свинью в качестве новой модели крупных животных для ИТ-доставки лекарств, демонстрируя простой и надежный метод доступа к ИТ-пространству поясничного отдела свиньи под контролем КТ-рентгеноскопии (CTF). Описанный метод получил название боковой LP (LLP).

2. Материалы и методы

2.1 Животные

Использовали самцов коммерческих сельскохозяйственных свиней гибридного происхождения Ландрас, весом от 25 до 55 кг на момент инъекции. Всего в этом исследовании инъецировали 15 животным.За свиньями наблюдали в течение 19 недель после операции, и перед умерщвлением их вскрывали. Все эксперименты проводились в соответствии с утвержденным протоколом Институционального комитета по уходу и использованию животных .

2.2 Анестезия и периоперационный уход

Общую анестезию вызывали внутримышечной инъекцией телазола (тилетамин и золазепам, 5 мг / кг; Fort Dodge Animal Health, Fort Dodge, IA), ксилазина (2 мг / кг; AnaSed, Akorn, Декатур, Иллинойс) и гликопирролат (0.01 мг / кг; Baxter Healthcare, Дирфилд, Иллинойс) и поддерживается 1,5–2% изофлураном (Terrel; Piramal Healthcare, Вифлеем, Пенсильвания), доставляемым со скоростью 4 л / мин с фракцией вдыхаемого кислорода 0,5. с использованием наркозного аппарата Ohmeda Modulus 2 с аппаратом ИВЛ Ohio 7000 (GE Healthcare, Принстон, Нью-Джерси). Режим вентиляции с контролируемым давлением, с давлением на вдохе 15 мм H ₂ O, частотой дыхания 12 вдохов в минуту и ​​соотношением выдоха к вдоху 2: 1. SpO2, артериальное давление, частота дыхания и температура тела контролировались на протяжении всей процедуры.

Животные получали профилактику антибиотиками в виде однократной дозы цефазолина (1 г внутримышечно; Хоспира, Лейк Форрест, Иллинойс) и профилактического обезболивания в виде карпрофена (3 мг / кг; Римадил; Pfizer Animal Health, New York, NY), одну дозу подкожно перед процедурой с последующей ежедневной пероральной дозой в течение трех дней после операции). За животными ежедневно наблюдали после процедуры на предмет неврологического дефицита или каких-либо общих признаков дистресса.

2.3 Визуализация

Изображения были получены с использованием клинического CTF-сканера (Definition, Siemens Healthcare, Forchheim, Germany), который включал аппаратное и программное обеспечение для интервенционных 3D-процедур.

Сначала были получены переднезадние и боковые топограммы (рентгенограммы с низкой дозой облучения) нижней части живота, чтобы определить степень последующей более точной, но анатомически локализованной визуализации. Напряжение и ток трубки составляли 120 кВ и 35 мА, соответственно, при толщине среза 0,6 мм. Использовалось стандартное ядро ​​топограммы сканера (Т20). Ядро — это зависящий от сканера выбираемый параметр, влияющий на пространственное разрешение изображения и появление текстуры шума.

После этого была проведена спиральная компьютерная томография перед инъекцией пояснично-крестцовой части позвоночника с рентгеноконтрастной направляющей сеткой, установленной на позвоночном столбе для определения соответствующих анатомических структур по отношению к поверхности тела. Использовали напряжение на трубке 120 кВ, время вращения 0,5 с, коллимацию 64 × 0,6 мм и шаг 1,2. Автоматическая модуляция тока трубки отрегулировала выход излучения в соответствии с размером скребка относительно эталонного размера. Использование эталонного качества изображения 340 мАс привело к произведению эффективного тока трубки на время (т.е.е., произведение тока трубки на время, деленное на шаг) примерно от 87 до 154 эффективных мАс. Среднее ядро ​​(B40) использовалось для восстановления изображений срезов толщиной 3 мм.

Затем сканер был переключен в режим CTF (интервенционный), в котором периодическое аксиальное («пошаговое сканирование») сканирование вместе со специализированным режимом просмотра (называемым производителем сканера «режим биопсии») использовалось для мониторинга продвижение иглы. Пакет интервенционных вмешательств сканера позволял полностью работать и просматривать варианты изнутри комнаты сканирования за счет использования встроенного ножного переключателя, ручного контроллера и лазерного маркера, освещающего плоскость сканирования.По команде был создан набор из трех смежных изображений, которые затем одновременно отображались. Использовали напряжение трубки 120 кВ, ток трубки, произведение времени 80 мАс, время вращения 0,5 с, коллимацию 6 × 1,2 мм, толщину среза 2,4 мм и среднее ядро ​​(B40). После завершения инъекции была получена спиральная компьютерная томография после инъекции той же анатомической области с использованием тех же настроек сканирования / реконструкции, что и для спирального сканирования перед инъекцией.

Постобработка и оценка изображений выполнялись на Syngo MultiModality Workplace (Siemens Healthcare, Forchheim, Германия).Конкретные протоколы обработки перечислены в подписях к рисункам. Если не указано иное, использовалось смотровое окно в 400 единиц Хаунсфилда (HU) с центром в 40 HU.

2.4 Интратекальная инъекция

Животных помещали на кушетку для КТ в положении лежа в рентгеноконтрастной люльке с несколькими подушечками, вставленными под брюшную полость, чтобы животное оставалось неподвижным и сохраняло дорсальную выпуклость поясничного отдела позвоночника. В это время была получена топограмма с последующей спиральной компьютерной томографией всей пояснично-крестцовой части позвоночника для выбора подходящего уровня позвоночника, при этом точка входа в кожу иглы и угол определены, как подробно описано ниже.Затем вышележащая кожа была помечена, очищена и стерильно подготовлена ​​к процедуре.

Затем спинальная игла (25G 3,5 ″, точка Квинке; Kimberly-Clark, Roswell, GA) вводилась через кожу на 1-2 см латеральнее средней линии с последующим постепенным продвижением вентро-медиально под углом 10–20 градусов. градусов по отношению к сагиттальной плоскости до тех пор, пока не будет достигнута латеральная выемка IT-пространств, как визуализировано с помощью CTF-наведения. Размещение ИТ было установлено путем инъекции 0,5 мл йодсодержащей радиоконтрастной среды iohexol (300 мгI / мл; Omnipaque; Novation, Чикаго, Иллинойс) в разведении 1:10 в физиологическом растворе.Распространение контрастного вещества в спинномозговой жидкости (ЦСЖ) визуализировали неоднократно, чтобы проверить положение кончика иглы в субарахноидальном пространстве.

3. Результаты

3.1 Анатомия позвоночника свиньи, визуализированная с помощью CTF, соответствующая LP

Как показано на, мы выбрали боковой доступ через межслойное отверстие, во время которого инъекционная игла прошла через следующие структуры, чтобы достичь IT-пространство: (1) кожа; (2) подкожная соединительная ткань; (3) межостистая связка; (4) желтая связка ; (5) эпидуральное пространство; (6) твердая мозговая оболочка; (7) потенциальное субдуральное пространство; (8) паутинная оболочка; (10) субарахноидальное пространство.Компьютерная томография, отображающая анатомические ориентиры позвоночника свиньи, позволила идентифицировать ряд отличительных особенностей по сравнению с анатомией человека. Эти наблюдения были дополнительно подтверждены во время вскрытия трупа, которое систематически проводилось у всех животных.

КТ выявила анатомические особенности у свиньи, требующие особого подхода к люмбальной пункции (LP).

A. Многоплоскостная реконструкция для разграничения анатомических ориентиров.Три перпендикулярных плоскости демонстрируют положение conus medullaris на уровне S2 позвонка. Пунктирными линиями показано взаимное расположение восстановленных изображений. (Слева — аксиальный; посередине — сагиттальный; справа — фронтальный [наклонен вперед, чтобы быть параллельным продольной оси спинного мозга в крестцовом сегменте]). CM, conus medullaris; EF, эпидуральный жир.

B. Осевая визуализация, используемая для планирования процедуры, захватывает два среза на уровне L6 позвонка.Вверху: разрез на уровне межпозвонковых отверстий показывает позвоночный канал, окруженный дорсально остистым отростком и пластинкой позвонка. Внизу: разрез на уровне межслойного пространства показывает разрез, подходящий для люмбальной пункции. Спинномозговой канал покрыт сверху видимой желтой связкой. Гиперплотная область в середине связки представляет собой кальциноз, которого следует избегать при введении иглы LP. Текальный мешок содержит спинной мозг, окруженный редким количеством спинномозговой жидкости, при этом несколько большие объемы накапливаются в боковых полостях текального мешка.Углубления образуют латеральную сторону текального мешка, ограниченную медиально спинным мозгом и латерально эпидуральным пространством. Оптимальная траектория впрыска обозначена здесь пунктирной линией. Выбор подходящей точки входа в кожу облегчался путем размещения направляющей сетки на поверхности тела (звездочка). Ca — кальциноз; EF, эпидуральный жир; TS, текальный мешок.

C. Трехмерная реконструкция с объемной визуализацией отображается в скелетных структурах нижней части туловища.Дистальные четыре поясничных позвонка переходят в крестец, состоящий из четырех частично сросшихся звеньев, за которым следуют копчиковые позвонки, образующие хвост свиньи. Вверху: вид сбоку. В центре: задне-передний вид. Внизу: разрез в средней плоскости, показывающий ход и относительные размеры позвоночного канала, разграниченного вентрально телами позвонков и дорсально остистыми отростками и пластинками позвонков. Уровень вводимого L5 – L6 часто оказывался наиболее подходящим для инъекции.Направляющая сетка (звездочка) отмечает расположение поверхности тела.

Шкала: 3 см.

Спинной мозг у свиней простирается до уровня S2-S3, в отличие от взрослых людей, где спинной мозг заканчивается на уровне L1 – L2 (). Таким образом, принцип безопасного выполнения LP у людей, заключающийся в том, чтобы вводить иглу ниже уровня конуса , не может быть реализован на свинье.

Эпидуральное пространство свиньи, ограниченное ligamentum flavum дорсально и твердой мозговой оболочкой вентрально, у свиньи было заполнено обильной жировой тканью ().У людей жир обычно редкий. Поэтому размеры эпидурального пространства свиней были намного больше, особенно у более крупных животных, достигая 10 мм у животного весом 50 кг. Эпидуральный жир привел к переднему вздутию твердой мозговой оболочки с последующим уменьшением размера ИТ-пространства. Для свиньи в положении лежа это привело к уменьшению количества спинномозговой жидкости в поясничной области по сравнению с людьми. В результате самопроизвольный отток CSF не мог служить индикатором успешной ИТ-инъекции.Фактически, мы столкнулись с его отсутствием, когда у некоторых животных доступ к ИТ-пространству осуществлялся по средней линии. Однако компьютерная томография показала, что больший объем спинномозговой жидкости накапливается в боковых выемках ИТ-пространства, что мы использовали в технике инъекции, как описано в следующем разделе.

Кроме того, соответствующие скелетные структуры, включая остистые отростки, пластинки позвонков и суставные отростки, были громоздкими по сравнению с людьми () у всех животных, кроме молодых (<35 кг, <3–4 месяцев).Пространство между остистыми отростками, а также межслойное пространство, следовательно, составляло всего несколько миллиметров. Кроме того, межостистые связки и желтая связка имели тенденцию к окостенению у старых (> 35 кг) свиней, при этом позвонки (особенно в шейном и поясничном отделах) практически срослись. Поэтому некоторые межпозвоночные промежутки вообще не подходили для инъекций. Во многих других случаях прямой задний доступ по средней линии через связки, который является стандартом при ЛП у человека, был невозможен из-за кальцификации.Более того, panniculus adiposus , слой жира, отделяющий кожу от параспинальных мышц, имел толщину 5 см в поясничной области, и иглу приходилось вводить относительно глубоко, пока не были достигнуты нижележащие структуры, упомянутые выше.

Эти анатомические наблюдения, очевидные с помощью компьютерной томографии и последующего вскрытия трупа, привели нас к разработке описанной ниже техники инъекции, которая отличается от стандартной LP у людей.

3.2 Техника инъекции

Пример топограммы показан на и два репрезентативных изображения спирального сканирования показаны на.Эти изображения позволили нам выбрать наиболее подходящее место инъекции, заранее продумав весь путь иглы. Поскольку мы столкнулись с заметными межличностными различиями в анатомии скелета, а именно с различными размерами межслойных отверстий и неравномерной степенью окостенения связок, мы тщательно спланировали предполагаемую траекторию инъекции, включая точку входа в кожу, точку предполагаемого проникновения в твердую мозговую оболочку и наклон иглы для нацеливания на латеральную выемку субарахноидального пространства, избегая при этом любых скелетных или вторично окостеневших структур.Таким образом, игла вводилась латеральнее средней линии под антеромедиальным наклоном и продвигалась к латеральному углублению субарахноидального пространства, как описано на рис. Латеральная модификация метода LP позволила нам свести к минимуму вероятность повреждения спинного мозга, обойти наиболее часто окостеневшую центральную часть желтой связки и воспользоваться преимуществами локального латерального накопления спинномозговой жидкости. Мы обнаружили, что сегмент L5 – L6 является наиболее подходящим для инъекции, поскольку расстояние между двумя соседними позвоночными пластинками составляет 0.5 см даже у молодых (25 кг) животных. Хотя связки имели тенденцию быть более окостеневшими по сравнению с верхними поясничными уровнями, эта проблема была эффективно преодолена за счет исключения структур средней линии за счет изгиба иглы, как описано выше.

A. Перед началом процедуры были получены латеральная (слева) и задне-передняя (справа) топограммы (локализующие рентгенограммы низкой дозы с шириной окна 350 единиц Хаунсфилда [HU] с центром в 50 HU) с рентгеноконтрастной направляющей сеткой, размещенной над предполагаемой областью инъекции (звездочка).Топограмма использовалась для выбора сегмента позвоночника длиной 18–26 см, охватывающего 2–3 дистальных поясничных позвонка и проксимальную часть крестца, которые затем были визуализированы с помощью спиральной компьютерной томографии. Масштабные линейки: 10 см.

B. Как только траектория инъекции была определена, сканер переключался в режим CTF, в котором три смежных изображения толщиной 2,4 мм неоднократно регистрировались на протяжении всей процедуры для отслеживания продвижения иглы. На обеих панелях угол наклона иглы очевиден, потому что более каудальные изображения (внизу) показывают кончик иглы, а ростральные — только верхнюю часть стержня иглы (вверху).

Левая колонка: Игла была правильно введена через межслойное пространство L5 – L6 в соответствии с траекторией, предварительно определенной на этапе планирования, при этом кончик иглы был помещен в правую боковую выемку субарахноидального пространства. Правая колонка: пример неудачной попытки введения иглы на том же позвоночном уровне. Кожа была пронизана в той же точке, что и на предыдущей серии изображений (слева). Однако траектория иглы была неправильной в обеих плоскостях. Боковой наклон недостаточен для достижения контралатерального кармана субарахноидального пространства.Чрезмерный каудальный изгиб привел к тому, что траектория иглы не попала в межслойное отверстие (вместо этого контактировала с пластинкой позвонка). В таких случаях игла частично извлекалась и вставлялась повторно с коррекцией угла в обеих плоскостях.

SA, субарахноидальное пространство; SC, спинной мозг. Масштабные линейки: 3 см.

После выбора места инъекции сканер был переключен в режим CTF, визуализирующий целевой сегмент на трех смежных аксиальных изображениях толщиной 2,4 мм ().Такая установка позволяла оператору видеть аксиальную плоскость, а также оценивать ростро-каудальный размер (ось Z или угол наклона в продольной плоскости) во время процедуры. Оператор мог получать изображения или сдвигать сканируемую плоскость рострально или каудально в любой момент во время введения иглы, что позволяло контролировать продвижение иглы.

Расположение кончика иглы было субъективно оценено экспериментатором, пропуская иглу через два слоя сопротивления, состоящих из желтой связки и твердой мозговой оболочки (часто называемой техникой «ощупывания»).В некоторых случаях это может быть правильно коррелировано с непосредственной близостью кончика иглы к спинному мозгу на изображении CTF. Однако мы обнаружили, что метод «ощупывания» часто был ненадежным у свиней, поскольку окостеневшие связки давали различную степень сопротивления, а жировые отложения в эпидуральном пространстве приводили к относительно большому расстоянию между желтой связкой и твердой мозговой оболочкой. по сравнению с расстоянием между твердой мозговой оболочкой и задней поверхностью спинного мозга.Таким образом, размещение ИТ было подтверждено миелограммой, на которой заполнение субарахноидального пространства контрастным веществом и очертание спинного мозга подтвердили истинное субарахноидальное размещение. демонстрирует характерную картину распространения контраста в субарахноидальном пространстве.

Интратекальное размещение кончика иглы было подтверждено инъекцией 0,5 мл разбавленного контрастного вещества, йогексола, на уровне позвоночника L5 – L6.

А. Серия CTF показывает накопление гиперплотного контраста в зависимом вентральном субарахноидальном пространстве с очевидным образованием уровней жидкости, что отличает правильное субарахноидальное размещение от непреднамеренной эпидуральной, субдуральной или интрапаренхимальной инъекции.

B. Чтобы проиллюстрировать ростро-каудальное распределение контрастного вещества, срединный сагиттальный вид пояснично-крестцового отдела позвоночника был реконструирован на основе осевых данных путем мультипланарного переформатирования. Поскольку животное находилось в положении лежа во время введения контраста, оно распределялось вентрально по гравитационному градиенту с равномерной каудальной и ростральной диффузией.Обратите внимание на небольшое количество воздуха, которое случайно попало в текальный мешок во время инъекции.

Co, contrat media; А, воздух. Масштабные линейки: 3 см.

4. Обсуждение

Настоящее исследование продемонстрировало модель LP на свинье для доставки лекарств ИТ с технически проверяемым результатом. Компьютерная томография выявила анатомические проблемы, связанные с выполнением LP у свиней, которые были устранены с помощью техники боковой инъекции под контролем CT, LLP.

Основные моменты

• Новый метод интратекального введения лекарств свиньям

• КТ-анатомия, демонстрирующая ограничения, лежащие в основе неудач методов ЛП у человека

• Подход, основанный на нацеливании на латеральную текальную впадину, называемую латеральной люмбальной пункцией

9000

• Эта новая модель крупных животных обладает уникальными преимуществами по сравнению с ее альтернативами

Благодарности

Исследование проводилось при финансовой поддержке Фонда семьи Шульце (А.S.B.) и грантом NIH K08NS 52232-3 (K.H.L.).

Сноски

¹ Сокращения: IT: интратекальный; ЦСЖ: спинномозговая жидкость; КТ: компьютерная томография; CTF: КТ-рентгеноскопия; LP: люмбальная пункция; LLP: боковой люмбальный прокол

Заявление издателя: Это PDF-файл неотредактированной рукописи, принятой к публикации. В качестве услуги для наших клиентов мы предоставляем эту раннюю версию рукописи. Рукопись будет подвергнута копированию, верстке и рассмотрению полученного доказательства, прежде чем она будет опубликована в окончательной форме для цитирования.Обратите внимание, что во время производственного процесса могут быть обнаружены ошибки, которые могут повлиять на содержание, и все юридические оговорки, относящиеся к журналу, имеют отношение.

Ссылки

• De la Calle JL, Paino CL. Процедура прямой люмбальной пункции у крыс. Brain Res Bull. 2002; 59: 245–50. [PubMed] [Google Scholar]
• Дайс К., Сак В., Венсинг К. Учебник ветеринарной анатомии. 3. Звуковые оповещатели; Philadelphia: 2002. [Google Scholar]
• Fairbairn L, Kapetanovic R, Sester DP, Hume DA.Система мононуклеарных фагоцитов свиньи как модель для понимания врожденного иммунитета и болезней человека. J Leukoc Biol. 2011; 89: 855–71. [PubMed] [Google Scholar]
• Федеричи Т., Тауб Дж. С., Баум Г. Р., Грей С. Дж., Григер Дж. К., Мэтьюз К. А., Хэнди С. Р., Пассини М. А., Самульски Р. Дж., Булис Н. М.. Надежная трансдукция спинномозговых мотонейронов после интратекальной доставки AAV9 свиньям. Gene Ther. 2012; 19: 852–9. [PubMed] [Google Scholar]
• Goodman BS, Bayazitoglu M, Mallempati S, Noble BR, Geffen JF.Пункция твердой мозговой оболочки и субдуральная инъекция: осложнение поясничных трансфораминальных эпидуральных инъекций. Врач боли. 2007; 10: 697–705. [PubMed] [Google Scholar]
• Goransson-Nyberg A, Fredriksson SA, Karlsson B., Lundstrom M, Cassel G. Токсикокинетика зомана в спинномозговой жидкости и крови анестезированных свиней. Arch Toxicol. 1998. 72: 459–67. [PubMed] [Google Scholar]
• Hylden JL, Wilcox GL. Интратекальный морфин у мышей: новый метод. Eur J Pharmacol. 1980; 67: 313–6. [PubMed] [Google Scholar]
• Керн С.Е., Аллен Дж., Вагстафф Дж., Шафер С.Л., Якш Т.Фармакокинетика конопептида контулакин-G (CGX-1160) после интратекального введения: анализ данных исследований на биглях. Anesth Analg. 2007; 104: 1514–20. оглавление. [PubMed] [Google Scholar]
• Ли Дж. Х., Ли Дж. К., Сео Б. Р., Мун С. Дж., Ким Дж. Х., Ким Ш. Повреждение спинного мозга, вызванное прямым повреждением во время трансфораминальной эпидуральной инъекции в шейку матки. Reg Anesth Pain Med. 2008; 33: 377–9. [PubMed] [Google Scholar]
• Malkmus SA, Yaksh TL. Интратекальная катетеризация и доставка лекарств у крыс.Методы Mol Med. 2004; 99: 109–21. [PubMed] [Google Scholar]
• McCall FC, Telukuntla KS, Karantalis V, Suncion VY, Heldman AW, Mushtaq M, Williams AR, Hare JM. Модели инфаркта миокарда и интрамиокардиальных инъекций у свиней. Nat Protoc. 2012; 7: 1479–96. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
• McCracken T, Kainer RTS. Цветовой атлас анатомии крупных животных Сперджена: Основы. 1. Уайли-Блэквелл; Ames: 2006. [Google Scholar]
• Mestre C, Pelissier T, Fialip J, Wilcox G, Eschalier A.Способ выполнения прямой чрескожной интратекальной инъекции крысам. J Pharmacol Toxicol Methods. 1994; 32: 197–200. [PubMed] [Google Scholar]
• Meurens F, Summerfield A, Nauwynck H, Saif L, Gerdts V. Свинья: модель инфекционных заболеваний человека. Trends Microbiol. 2012; 20: 50–7. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
• Milants WP, Parizel PM, de Moor J, Tobback IG, De Schepper AM. Эпидуральный и субдуральный контраст в миелографии и КТ миелографии. Eur J Radiol. 1993; 16: 147–50.[PubMed] [Google Scholar]
• Pogatzki EM, Zahn PK, Brennan TJ. Поясничная катетеризация субарахноидального пространства полиуретановым катетером 32 калибра на крысе. Eur J Pain. 2000; 4: 111–3. [PubMed] [Google Scholar]
• Rijsdijk M, van Wijck AJ, Kalkman CJ, Meulenhoff PC, Grafe MR, Steinauer J, Yaksh TL. Оценка безопасности и фармакокинетика интратекального метилпреднизолона ацетата у собак. Анестезиология. 2012; 116: 170–81. [PubMed] [Google Scholar]
• Сторксон Р.В., Кьорсвик А., Тьолсен А., Хоул К.Поясничная катетеризация субарахноидального пространства позвоночника у крысы. J Neurosci Methods. 1996. 65: 167–72. [PubMed] [Google Scholar]
• Suzuki Y, Yeung AC, Ikeno F. Репрезентативная модель сердечно-сосудистых заболеваний человека на свиньях. J Biomed Biotechnol. 2011; 2011: 195483. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
• Тим Т. Человекоподобный атеросклероз у мини-свиней: новая модель обнаружения и лечения уязвимых бляшек. Дэн Мед Булл. 2010; 57: B4161. [PubMed] [Google Scholar]
• Ван Гомпель Дж. Дж., Бауэр М. Р., Уоррелл Г. А., Стед М., Мейер Т. Р., Гёрсс С. Дж., Чанг С. И., Ким И., Мейер Ф. Б., Ричард Марш В., Марш М. П., Ли К. Х.Модель свиней для трансляционного исследования инвазивного внутричерепного мониторинга. Эпилепсия. 2011; 52: e49–53. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
• Вагнер А.Л. Эпидуральные инъекции под контролем компьютерной томографии: техника и результаты. AJNR Am J Neuroradiol. 2004; 25: 1821–3. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
• Вагнер К., Уилсон Дж., Саберс С. Медицина боли: интервенционные методы под контролем флуороскопии. Фонд Мэйо медицинского образования и исследований; Рочестер: 2003. [Google Scholar]
• Watson C, Paxinos G, Kayalioglu G.Спинной мозг: текст и атлас Фонда Кристофера и Даны Рив. 1. Академическая пресса; Сан-Диего: 2008. [Google Scholar]
• Wegner K, Horais KA, Tozier NA, Rathbun ML, Shtaerman Y, Yaksh TL. Разработка модели ноцицептивного теплового бегства у собак. J Neurosci Methods. 2008. 168: 88–97. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
• Weil L, Frauwirth NH, Amirdelfan K, Grant D, Rosenberg JA. Флюороскопический анализ распространения контраста в поясничном отделе эпидуральной анестезии после инъекции в поясничный межслойный промежуток.Arch Phys Med Rehabil. 2008; 89: 413–6. [PubMed] [Google Scholar]
• Yaksh TL. Анальгетическое действие интратекальных опиатов у кошек и приматов. Brain Res. 1978; 153: 205–10. [PubMed] [Google Scholar]
• Якш Т.Л., де Катер А., Дин Р., Бест BM, Милянич GP. Фармакокинетический анализ зиконотида (SNX-111), интратекального анальгетика, блокирующего кальциевые каналы N-типа, вводимого собаке болюсом и инфузией. Нейромодуляция. 2012 [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
• Якш Т.Л., Руди Т.А.Хроническая катетеризация субарахноидального пространства спинного мозга. Physiol Behav. 1976; 17: 1031–6. [PubMed] [Google Scholar]
• Yaksh TL, Tozier N, Horais KA, Malkmus S, Rathbun M, Lafranco L, Eisenach J. Токсикологический профиль антагонистов N-метил-D-аспартата, доставленных интратекальной инфузией на модели собак. Анестезиология. 2008; 108: 938–49. [PubMed] [Google Scholar]

Общие анатомические наблюдения крестца морской свинки (Cavia porcellus)

Как цитировать: Kumary, S.Уша, Мурти, О. Р., Каннеканти, Р., и Рамеш, Г. (2020). Общие анатомические наблюдения крестца морской свинки (Cavia porcellus). Международный журнал исследований в области животноводства, 10 (2), 67-72. DOI: 10.5455 / ijlr.20200114051014

Введение

Морские свинки ( Cavia porcellus ) — небольшие лабораторные животные, которые составляют небольшой подотряд (гистрикоморфный) отряда rodentia. Этот вид грызунов, вероятно, впервые завезен в Европу из Южной Америки около 400 лет назад (Wagner and Manning, 1976).В исследованиях часто используются всего пять штаммов морских свинок. Самая распространенная, короткошерстная американская или английская морская свинка также является самой популярной разновидностью лабораторных и домашних животных. Другой обычно используемый лабораторный сорт включает штамм Duncan Hartley, Hartley, штамм 2 и штамм 13 (Clemons and Seeman, 2011). Экспериментальные животные, такие как морские свинки, мыши, крысы, свиньи и обезьяны, играют важную роль в решении многих человеческих проблем в медицине человека, поскольку анатомическая структура органов экспериментальных животных аналогична анатомической структуре органов человека (Al- Шарут, 2014).Однако литературы по детальному изучению общих морфологических особенностей скелета морской свинки, включая крестец, было очень мало. Таким образом, настоящее исследование было проведено с целью изучить основные анатомические особенности, включая половой диморфизм крестца у морских свинок.

Материалы и методы

Шесть взрослых морских свинок (три самца и три самки) линии Дункан Хартли были получены для исследовательских целей из Лаборатории медицины животных, молочная колония Мадхаварам, ТАНУВАС, Ченнаи-600051.Весь скелет этих животных был получен путем естественной мацерации, и, кроме того, крестец этих животных был взят для этого исследования. Длина крестца измерялась от краниального до каудального концов. Ширина крестца измерялась в средней и вершинной частях основания. После общих морфометрических наблюдений крестец морских свинок подвергали грубым морфологическим наблюдениям.

Результаты и обсуждение

Крестец у самцов и самок морских свинок оказался треугольной формы, как сообщалось у домашних животных (Dyce et al., 2006) и синего быка (Sathapathy et al. , 2017). Средняя длина крестца самца морской свинки составляла 2,9 см, а у самки морской свинки — 2,2 см. Однако длина крестца африканской гигантской крысы составляла 3,8-4 см (Olude et al. , 2013). Средняя ширина у основания (боковой поверхности крыла) крестца составляла 1,85 см и 1,9 см у морских свинок-самцов и самок соответственно. Средняя ширина в середине крестца составляла 0,85 см и 0,8 см, а в вершине — 0,45 см и 0.7 см у самцов и самок морских свинок соответственно. Вершина крестца самки морской свинки была шире, чем у самца. Крестец морских свинок обоего пола имел тело, два крыла, основание и вершину, как у домашних животных (Dyce et al., 2006), тогда как Kamal et al. (2016) заявил, что крестец белого новозеландского кролика имел тело, две нервные дуги, два поперечных отростка и два суставных отростка.

Крестец самца морской свинки образовался путем слияния четырех крестцовых позвонков, как у свиньи (McCrackin and Michael Swindle, 2016) и африканской гигантской крысы (Olude et al., 2013), тогда как Romer и Parson (1978) заявили, что крестцовые позвонки млекопитающих обычно состоят из трех-пяти крестцовых позвонков. У морской свинки-самки крестец образовался в результате слияния трех крестцовых позвонков. Половой диморфизм в отношении количества крестцовых позвонков в настоящем открытии совпал с отчетом Нунана (1994) у морских свинок, тогда как Клемонс и Симан (2011) сообщили, что у морских свинок крестец состоял из двух-трех сросшихся частей. крестцовые позвонки. Уайт-хаус и Гроув (1958) заявили, что у кролика первые три крестца слились, а четвертый позвонок слился по-разному, чего не наблюдалось в настоящем исследовании.Кроме того, Кристиан (2008) заявил, что у взрослых крыс и кроликов было четыре сросшихся крестцовых позвонка.

Однако у хомяка крестец состоял из четырех крестцовых позвонков, тогда как у шиншиллы было только два крестцовых позвонка (Suckow et al., 2012). Кроме того, Getty (2012) и Prasanth Babu et al. (2017) заявил, что крестец состоит из трех сросшихся крестцовых позвонков у собаки и у индийского мангуза соответственно. О наличии трех крестцовых позвонков в крестце также сообщили Powers and Brown (2012) в Ferret, Erkin et al. (2013) у кролика и Kamal et al. (2016) белого новозеландского кролика. У муравьедов крестец состоял из четырех или пяти сросшихся крестцовых позвонков, как сообщалось Borges et al. (2017). Сращения крестца с последним поясничным позвонком, а также с первым копчиковым позвонком у морской свинки не наблюдалось. Но Джером и Хох (2012) сообщили, что нередко можно наблюдать слияние последнего поясничного отдела с крестцом у грызунов. Borges et al. (2017) заявил, что первый копчиковый позвонок сросся с крестцом и седалищной костью у муравьеда.

У морской свинки длинная ось тела была плоской, в то время как у быка она была изогнута по данным Getty (2012). Он имел дорсальную и вентральную поверхности. Дорсальная поверхность оказалась широкой краниально и узкой сзади. Дорсальная поверхность пересекалась дорсальным срединным гребнем (рис.1), поскольку спинные остистые отростки у морской свинки срослись, как у тигра (Pandit, 1994), у быка (Dyce et al., 2006), у африйской серой крысы ( Olude et al., 2013) и в Giant Ant eater (Borges et al., 2017). Слитые спинные остистые отростки выглядели как костная пластинка в крестце морских свинок обоих полов. Высота остистого отростка уменьшена от краниального к хвостовому концам. У морских свинок боковые крестцовые гребни были тонкими и наблюдались как по одному по обе стороны от срединного гребня крестца морской свинки (Рис. 1), как и у быка (Dyce et al., 2006). Кроме того, три и два дорсальных крестцовых отверстия наблюдались по обе стороны от основания дорсального срединного гребня у самцов и самок морских свинок соответственно (рис.1).

Рис.1: Фотография, показывающая дорсальный аспект крестца самцов и самок морских свинок. (AP-передний суставной отросток, W-крыло, LS- латеральный крестцовый гребень, DSC-дорсальный крестцовый гребень, 1,2,3-дорсальные крестцовые отверстия)

Вентральная поверхность крестца как самцов, так и самок морских свинок выглядела как плоская поверхность с поперечными линиями. У самцов морских свинок наблюдались три поперечные линии как показатель слияния четырех крестцовых позвонков (рис. 2), как полагают Dyce et al. (2006) у домашних животных. У морской свинки-самки количество поперечных линий было двумя, так как количество крестцовых позвонков было три (рис. 2). У морских свинок обоих полов тела крестцовых позвонков представляли собой длинные сегменты. Подобно дорсальной поверхности, вентральная поверхность крестца также имела три и два вентральных крестцовых отверстия у самцов и самок морских свинок соответственно (рис. 2). Считается, что эти отверстия позволяют выходить дорсальным и вентральным крестцовым спинномозговым нервам (Maynard and Downes, 2019).Количество межпозвонковых отверстий соответствовало количеству крестцовых позвонков у гигантского муравьеда (Borger et al., 2017).

Рис. 2: Фотография, показывающая вентральную сторону крестца самцов и самок морских свинок. (TP-поперечный отросток, VS-вентральные крестцовые отверстия)

Настоящее наблюдение относительно отношения количества межпозвонковых отверстий к количеству крестцовых позвонков не согласуется с утверждением вышеупомянутых авторов, так как они были расположены в межцентральном сращении крестцовых позвонков.Вентральная крестцовая борозда средней крестцовой артерии не была отчетливой в крестце морских свинок обоих полов.

Мыс был отчетливым в основании тела первого крестцового позвонка (рис. 3), как у собаки (Miller et al. , 1964) и у индийского мангуза (Prasanth Babu et al., 2017) и синим цветом. бык (Sathapathy et al., 2017). Крылья были двух призматическими и имели суставную фасетку в нижней части латеральной стороны подвздошной кости (рис.1), как у быка (Dyce et al., 2006). В настоящем исследовании медиальная сторона крыльев или крылья крестца показала узкую суставообразную поверхность.

Рис. 3: Фотография, показывающая переднюю часть крестца самца морской свинки. (SP-остистый отросток, B-тело первого крестцового позвонка, P-Promontary)

Черепные и хвостовые нервные дуги наблюдались в крестце морской свинки. Передние суставные отростки были отчетливыми, их было два, что согласуется с наблюдениями Olude et al. (2013) у африканской гигантской крысы. Эти суставные отростки обращены вверх для сочленения с задними суставными отростками последнего поясничного позвонка, как у домашних животных (Dyce et al., 2006). Поперечных отростков было два, они представляли собой очень маленькие тонкие выступы, направленные каудально от тела последнего крестцового позвонка (рис. 2), как у собаки (Miller et al., 1964). У африканских гигантских крыс поперечный отросток несколько слился с тем, что, вероятно, возникло в результате окостенения из-за старения, и большинство из них все еще отделялись только соединительной тканью и связкой (Olude et al., 2013). Слияние поперечных отростков в виде пластинчатой ​​структуры не было замечено в крестце морской свинки, тогда как Prasanth Babu et al . (2017) заявили, что у индийского мангуза поперечный отросток второго и третьего крестцовых позвонков был соединен пластинкой и направлен вниз и назад. Однако Olude et al. (2013) сообщил, что поперечные отростки были видимыми и сливались с поперечными отростками первого и второго крестцовых позвонков, сочленяющимися с подвздошной костью, в то время как оставшиеся два никогда не участвовали в сочленении у африканских гигантских крыс.

Maynard и Downes (2019) сообщили, что поперечный отросток крестцовых позвонков был соединен вместе и образовал серию соединительных пластин у слепышей, а поперечный отросток в дальнейшем слился с остистым отростком крестца с образованием pars lateralis, как у слепышей. Эти наблюдения не наблюдались в крестце морской свинки. Черепное отверстие крестцового позвоночного канала было треугольной формы, тогда как каудальное отверстие было очень минимальным по размеру, напоминающим отверстие.

Заключение

Крестец морской свинки имел треугольную форму и образовался за счет сращения крестцовых позвонков.Он имел корпус, два крыла, основание и вершину. На тыльной стороне крестца морской свинки присутствовали дорсальный срединный крестцовый гребень и два боковых гребня. В каудальной части крестца присутствовали два поперечных отростка. Промонтарий был отчетливым. Некоторые грубые анатомические наблюдения крестца морской свинки показали половой диморфизм. У самцов морских свинок четыре крестцовых позвонка были слиты, образуя крестец, тогда как у самок крестец состоял из трех крестцовых позвонков. Точно так же количество межпозвонковых отверстий (как дорсальных, так и вентральных крестцовых отверстий) различалось у обоих полов.Вершина крестца у морских свинок-самок оказалась шире, чем у самцов.

Благодарности

Авторы очень благодарны декану ветеринарного колледжа Мадраса, профессору и главе лаборатории медицины животных, ТАНУВАС, Ченнаи-51, Тамил Наду, ИНДИЯ.

Список литературы

1. Аль-Шарут Х. А. (2014). Морфологическое и гистологическое исследование почки морской свинки. Международный журнал последних научных исследований и исследований. 5 (11): 1973-76.
2. Борхес Н.С., Круз В.С., Фарес Н.Б., Кардосо Дж. Р. и Брагато Н. (2017). Морфологическая оценка грудного, поясничного, крестцового отдела гигантского муравьеда ( Myrmecophaga tridactyle Linnaeus , 1758). Perquisa Veterinaia Brasilerira. 37 (4): 401-407.
3. Кристиан, М. С. (2008). В главе Текстовые методы оценки женской репродуктивной токсикологии и токсикологии развития в Принципах и методах токсикологии (Эд) Уоллес Хейс, A 5 ^th edition pp: 1689.
4. Клемонс, Д.Дж. и Seeman, J.L. (2011). Лаборатория морских свинок, второе издание, CRC Press.USA.
5. Дайс К.М., Сак В.О., Венсинг К.Дж. (2006). Учебник ветеринарной анатомии, 4 ^th Edn, Saunders Elsevier.
6. Эркин Ю., Айдын З., Тасодоген А. и Карви А. (2013). Новая методика длительной катетеризации эпидурального канала крестца у кролика. Бразильский журнал анестезиологии .63 (5): 385-388.
7. Гетти, Р. (2012). Анатомия домашних животных Сиссона и Гроссмана 5 ^th edn, Vol.II, East-West Press private Ltd, Нью-Дели.
8. Джером С. и Хох Б. (2012), Скелетная система в сравнительной анатомии и гистологии. Атлас мыши и человека (ред.) Treuting, Dintzis, Liggitt D, Frevert C.W., 2 ^nd edition.
9. Камаль Б., Рашед Р. Ф. и Эраш А. (2016). Развитие крестца и хвоста у белого новозеландского кролика ( Orcytolagus cuniculus ). Александрийский журнал ветеринарных наук, 51 (1): 147-154
10. Мейнард Р.Л. и Даунс Н. (2019).Анатомия и гистология лабораторных крыс в токсикологии и биомедицинских исследованиях, Академическая пресса.
11. МакКрэкин М.А. и Майкл Суиндл М. М. (2016). Глава 1-Биология, обращение, разведение свиней в лаборатории: хирургия, анестезия, визуализация и экспериментальные методы (ред.) Майкл Суиндл М. и Смит А.С. (2016), CRC Press , стр: 1-38.
12. Миллер М. Э., Кристенсен Г. К. и Эванс (1964). Анатомия собаки, WB Saunders Company, Филадельфия, США. 51-61.
13. Нунан Д. (1994).Морская свинка, информационный бюллетень Anzccart, Anzccart News, Vol. 7 (3) п: 1-7
14. Олуд М. А., Мустафа О. А., Огунбунми Т. К. и Олопаде Дж. О. (2013). Позвоночный столб, ребра и грудина африканской гигантской крысы ( Cricetomy gambianus waterhouse ). Научный мировой журнал : 1-5.
15. Pandit RV (1994). Остеология индийского тигра ( Panthera tigris ). Хранитель леса и директор Project Tiger, Melghet, Amravati . Бюллетень АБС No.VI,: 1-27
16. Пауэрс Л. В. и Браун С. А. (2012 г.). В разделе 1 «Основы анатомии, физиологии и содержания хорьков, кроликов и грызунов», «Клиническая медицина и хирургия» (ред.) Quesensberrry, K. E. and J. W. Carpenter, Elesvier and Saunders , p.12
17. Прасант Бабу А., Джагапати Рамайя, Дихиллесвара Рао С., Мадхавай Дж. И Томмар М. П. С. (2017), Общие анатомические исследования позвоночного столба индийского мангуса, Индийский журнал ветеринарной анатомии. 29 (1): 11-14.
18. Ромер А. С. и Парсонс Т. С. (1978).Тело позвоночных, компания W. B. Saunders, Филадельфия, США.
19. Сатхапати С., Дхоте Б. С., Сингх И., Маханта Д. и Тамил Селван С. (2017). Гросс-морфометрические исследования крестца синего быка ( Boselaphus tragocamelus). Журнал энтомологии и зоологии . 5 (6): 1591-1597
20. Suckow M.A., Стивенс К.А. и Уилсон Р.П. (2012). Лабораторный кролик, морская свинка, хомяк и другие грызуны, I издание, Academic Press., Elsevier.
21. Вагнер, Дж. Э. и Мэннинг, П.J (1976). Биология морской свинки, Academic Press, Нью-Йорк. Стр .: 53-62.
22. Белый дом R и Grove A (1958). Рассечение Кролика. Университетская учебная пресса, ООО Лондон.

Свинина — Руководство по разделке мяса

PDF — двуязычный (1,299 кб)

На этой странице

Схема отрубов
Схема скелета
Номенклатура и описание отрубов

• 1. Свинина
• 2. Туша свиная фаршированная
• 3. Свинина
• 4.Голова
• 5. Плечо
  • 5,1 Фут
  • 5.2 Скакательный сустав
  • 5,3 Лакон
  • 5,4 Челюсть
  • 5,5 Кости шеи
  • 5,6 Зубцы
  • 5,7 Пикник на плече
  • 5.8 Лопатка
• 6. Нога
  • 6,1 Фут
  • 6.2 Хвостовик
  • 6.3 Стойка стойки
  • 6,4 Центр ног
  • 6.5 Задняя часть ноги
  • 6,6 Половина стойки
  • 6,7 Половина приклада ноги
  • 6.8 ножек внутри
  • 6,9 Нога снаружи
  • 6.10 Проушина для ног
  • 6.11 Наконечник ножки
• 7. Поясница
  • 7.1 Ребрышки или жареные ребрышки
  • 7,2 поясница
  • 7,3 Филе филе
  • 7,4 Половина ребра корейки
  • 7,5 Филейная часть половина
  • 7,6 Ребра спинки
  • 7,7 Вырезка
• 8. Живот
  • 8,1 Боковые ребра
  • 8,2 Центральный вырез бокового ребра
  • 8,3 Боковое ребро со смещением по центру
  • 8.4 Грудная кость
  • 8,5 Боковые ребра грудки выкл
  • 8,6 сбоку (живот без костей)
  • 8.7 Юбка

Разновидности мяса
Список модификаторов мясной нарезки

Свинина — Схема отрубов

На этой схеме показаны мясные отрубы из свинины. Свинина состоит из ножки, поясницы, лопатки, лопатки и живота.

• Нога состоит из следующих разрезов:
  • фут
  • хвостовик
  • ножка, голенище
  • центр ног

• Поясница состоит из следующих отрубов:
  • филе
  • поясница
  • ребра спинки
  • ребрышки или жареные ребрышки

• Плечо состоит из следующих разрезов:
  • лопатка
  • пикник на плече
  • костей шеи
  • скакательный сустав
  • челюсть
  • фут

• Живот состоит из следующих разрезов:

На этой диаграмме показаны альтернативные отрубы корейки свинины.

Альтернативные отруби из свинины состоят из:

• филейная часть, вырезка половина
• корейка, половина ребра

На этой диаграмме показаны альтернативные отрубы свинины.

Альтернативные отрубы свинины состоят из:

• фут
• хвостовик
• ножка, половина стержня
• нога, задняя половина
• ножка, наконечник
• ножка, ушко
• нога, снаружи
• нога, внутри

Свинина — Диаграмма скелета

На этой схеме изображена схема скелета свинины.Он состоит из:

• копытные кости
• крестец
• костей спины (от 1 до 6/7 поясничных позвонков)
• костей спины (грудные позвонки с 1 по 14)
• костей шеи (шейные позвонки 1-7)
• атлас (1 ^st шейный позвонок)
• ушной вкладыш
• шейка лопатки
• лопатка ( лопатка )
• лучезапястный сустав ( запястье, )
• передних костей ( лучевая / локтевая )
• кость руки ( плечевая кость )
• грудина ( грудина )
• Реберный хрящ (реберный хрящ)
• штифт кость ( подвздошная кость )
• узкая часть бедренной кости (стержень подвздошной кости )
• суставная кость (головка бедра / вертлужной впадины )
• кость ноги ( бедренная кость )
• седалищная кость ( седалищная кость )
• коленная чашечка ( patella )
• коленный сустав (тибио-бедренное сочленение)
• костей голени задних конечностей ( большеберцовая / малоберцовая )
• сустав предплюсны

Номенклатура и описание мясных нарезок — Свинина

1. Свинина: — мясо, полученное из разделанных туш свиней. Он может быть получен от самцов, самок, ребристых или кастрированных животных.

2. Разделанная свиная тушка: означает свиную тушу, из которой удалены волосы и ногти на ногах, развитые молочные железы или кожа и голова, а туша потрошена и расколота.

3. Сторона свинины: означает одну (1) из двух (2) приблизительно равных частей свиной туши разделанной , полученной прямым разрезом от хвоста до шеи по средней линии.

4. Голова: означает, что часть разделанной свиной туши отделена от атласа (первый шейный позвонок) и может исключать челюсть .

Примечание: центр ноги не содержит суставной части кости ноги (проксимальное сочленение бедренной кости ).

Примечание: филейная часть содержит переднюю половину штифтовой кости ( подвздошной кости ).

Примечание: Поясница , половина вырезки не содержит ребер или их частей.

7,8 Пуговичные кости: часть костей спины (поперечный отросток поясничных позвонков) с прилегающими соединительными тканями, удаленными с поясницы .

8,2 Боковое ребро, центральный разрез: та часть бокового ребра , из которой удалены грудная кость и реберный хрящ.

8,3 Боковое ребро, отцентрованное — та часть бокового ребра , из которой удалена часть центрального среза. Боковое ребро от центра ребра состоит из части центрального отреза, грудной кости и реберного хряща.

8,4 грудная кость; свиные кости — часть боковых ребер , из которой было удалено ребро свинины, центральный разрез , и остались только грудинка и / или реберный хрящ.

8,5 Боковые ребра, грудная кость отключена — та часть бокового ребра , из которой была удалена грудная кость .

Разнообразные мясные продукты

• жир на спине / гра-де-дос
• колосья на руль
• сердце / кер
• почка / рогнон
• печень / фуа
• корка / куенна
• морда / музей
• хвост / очередь
• язык / язык
• футов / ступень
• мозг / сервелле

Шкура свиная (шкура): означает шкуру, полученную из разделанной на свиной туши или ее частей, и не включает морду, губы, кожу головы и уши.

Список модификаторов мясной нарезки

• Bone in / De coquille
• Без костей / Désossé (e)
• Панировка / Панэ (e)
• Отбивная бабочка / Côtelette papillon
• Колпачок снят / Паре
• Chop / Côtelette
• Отбивная с карманом / Côtelette à farcir
• Котлета / Эскалоп
• Корона / Розетка
• Корона жаркое / Курон
• Delicatize (d) / Attendri (re) mécaniquement
• Свинина, нарезанная кубиками / Porc en dés
• Французская отбивная / Côtelette à manche
• Кабоб / брошка
• Медальон / Médaillon
• Порция / Часть
• Жаркое / Роти
• Катаный / Роле
• Полукостное / полудезосе (e)
• Без кожи, без кожи / Découenné
• Стейк / Транш
• Фаршированные / Farci (e)
• Tenderize (d) / Attendri (r)
• Связанный / Ficelé
• Обрезанный / Паре

Примечание: Хотя эти модификаторы и не требуются, они могут использоваться для описания отрубов свинины при условии, что они информативны и не вводят в заблуждение.

Дата изменения:

2019-01-15

Крестец — анатомические изображения и информация

Крестец — большой клиновидный позвонок на нижнем конце позвоночника. Он образует прочную основу позвоночника в месте пересечения с тазобедренными костями, образуя таз. Крестец — очень прочная кость, которая поддерживает вес верхней части тела, поскольку она распространяется по тазу и ногам.В процессе развития крестец формируется из пяти отдельных позвонков, которые начинают соединяться в позднем подростковом и раннем взрослом возрасте, образуя единую кость примерно к тридцати годам. Продолжайте прокрутку, чтобы узнать больше ниже …

Нажмите, чтобы просмотреть большое изображение

На своем широком верхнем конце крестец образует фиброзно-хрящевой пояснично-крестцовый сустав с пятым поясничным позвонком над ним. Крестец сужается к точке на нижнем конце, где он образует фиброзно-хрящевой крестцово-копчиковый сустав с крошечным копчиком (копчиком). На левой и правой боковых сторонах крестец образует крестцово-подвздошные сочленения с подвздошной костью тазобедренной кости, образуя жесткий таз. Многие связки плотно связывают крестцово-подвздошные суставы вместе, чтобы уменьшить подвижность и укрепить таз.Вдоль передней поверхности крестец вогнут, чтобы обеспечить большее пространство в полости таза. Женский крестец короче, шире и изогнут назад больше, чем мужской крестец, чтобы обеспечить больше места для прохождения плода через родовые пути во время родов.

Многие нервы конского хвоста на нижнем конце спинного мозга проходят через крестец. Эти нервы входят в крестец из позвоночного отверстия поясничных позвонков через туннельный крестцовый канал.Эти нервы отходят от крестцового канала и выходят из крестца через четыре пары отверстий по бокам канала, называемые крестцовыми отверстиями, или через крестцовый перерыв на нижнем конце канала.

Крестец выполняет несколько важных функций в скелетной, мышечной, нервной и женской репродуктивной системах. Действуя как краеугольный камень таза, крестец связывает тазобедренные кости вместе на задней стороне и поддерживает основание позвоночного столба, когда он пересекается с тазом.Несколько ключевых мышц тазобедренного сустава, включая большую ягодичную мышцу, подвздошную мышцу и грушевидную мышцу, берут свое начало на поверхности крестца и тянут крестец для движения ноги. Крестец также окружает и защищает спинномозговые нервы нижней части спины, поскольку они петляют вниз, к концу туловища и в ноги. Наконец, крестец помогает сформировать тазовую полость, которая поддерживает и защищает нежные органы брюшно-тазовой полости и обеспечивает пространство для прохождения плода во время родов.

Сравнение анатомии шейного отдела позвоночника у телят, свиней и людей

Аннотация

Фоновый контекст

Животные обычно используются для моделирования позвоночника человека в экспериментах in vitro, и in vivo, . Во многих исследованиях изучались сходства и различия между животными и людьми в поясничных и грудных позвонках. Однако о количественном анатомическом сравнении шейных позвонков теленка, свиньи и человека не сообщалось.

Назначение

Сравнить фундаментальные структурные сходства и отличия тел позвонков от шейных позвонков у широко используемых экспериментальных моделей животных и людей.

Дизайн исследования

Анатомо-морфометрический анализ был выполнен на образцах шейного позвонка, взятых у людей и двух обычных крупных животных (т. Е. Телят и свиней).

Методы

Множественные морфометрические параметры были измерены непосредственно на образцах шейного отдела позвоночника двенадцати свиней, двенадцати телят и двенадцати трупов взрослых людей.Были измерены следующие анатомические параметры: ширина тела позвонка (VBW), глубина тела позвонка (VBD), высота тела позвонка (VBH), ширина позвоночного канала (SCW), глубина позвоночного канала (SCD), ширина ножки (PW), глубина дужки. (PD), наклон ножки (PI), ширина зуба (DW), глубина зуба (DD), общая ширина позвонка (TVW) и общая глубина позвонка (TVD).

Результаты

Атлантоаксиальный (C1–2) сустав у свиней аналогичен таковому у человека и может служить заменой человеку. Шейный отдел позвоночника свиньи очень похож на шейный отдел позвоночника человека, за исключением двух больших поперечных отростков в передних областях C4 – C6.Ширина и глубина зубовидного отростка теленка были больше, чем у человека. VBW и VBD шейных позвонков теленка были больше, чем у людей, но позвоночный канал был меньше. C7 теленка был относительно похож на C7 человека, поэтому он может быть хорошей заменой.

Заключение

Шейные позвонки свиньи были более подходящими заменами для человека, чем шейные позвонки теленка, особенно в отношении С1, С2 и С7. При выборе животной модели для исследования позвоночника необходимо учитывать биомеханические свойства анатомии нервных сосудов и различных функций сегментов шейных позвонков свиней и телят.

Образец цитирования: Sheng S-R, Xu H-Z, Wang Y-L, Zhu Q-A, Mao F-M, Lin Y, et al. (2016) Сравнение анатомии шейного отдела позвоночника у телят, свиней и людей. PLoS ONE 11 (2): e0148610. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0148610

Редактор: Стивен Л. Кларк, Государственный университет Оклахомы, США

Поступила: 23 июня 2015 г .; Одобрена: 20 января 2016 г .; Опубликован: 11 февраля 2016 г.

Авторские права: © 2016 Sheng et al.Это статья в открытом доступе, распространяемая в соответствии с условиями лицензии Creative Commons Attribution License, которая разрешает неограниченное использование, распространение и воспроизведение на любом носителе при условии указания автора и источника.

Доступность данных: Все соответствующие данные находятся в документе и его файле вспомогательной информации.

Финансирование: Эта работа поддержана грантами технологического офиса Qianjiang Talents Project of Technology провинции Чжэцзян (номер гранта: 2010R10075), Фонда естественных наук провинции Чжэцзян для выдающихся молодых ученых (номер гранта: LR12H06001), Научного проекта и технологическое бюро города Вэньчжоу (грант №: Y20100091) и Национальный природный фонд Китая (грант №81371988).

Конкурирующие интересы: Авторы заявили, что никаких конкурирующих интересов не существует.

Введение

Из-за возможности заражения, ограниченного количества человеческих трупов и этических соображений, связанных с использованием образцов человека, позвонков из животных моделей, таких как свиньи [1–9], телята [10–19], собаки [20–27], овцы [28–31] и олени [32–34] широко использовались в исследованиях позвоночника для замены позвонков человека. При выборе модельного вида животного необходимо учитывать несколько факторов, включая размер, стоимость, геометрию диска, клеточность и биомеханику.

В нескольких исследованиях [4,7,15,18,35] обсуждалась анатомия и биомеханика позвонков свиней и телят, особенно поясничных и грудных позвонков. Однако систематического количественного сравнения анатомических данных, соответствующих шейным позвонкам свиньи, теленка и человека, не проводилось. В текущем исследовании мы оценили геометрию шейных позвонков на двух моделях животных и нормализовали эти параметры для сравнения с шейными позвонками человека. Посредством этих сравнений мы оценили целесообразность использования шейных позвонков свиней и телят в качестве заменителей для экспериментов in vitro и in vivo на людях.

Материалы и методы

Двенадцать шейных позвонков свиней годовалого возраста (C0-T1) (вес 60–80 кг) и двенадцать шейных позвонков теленка недельного возраста (C0-T1) (масса 40–50 кг). ) были получены с местной бойни. Двенадцать шейных позвонков человека (C0-T1) взрослых в возрасте от 30 до 40 лет (вес 60–80 кг) были получены в Медицинском колледже Вэньчжоу. Специалист по позвоночнику осмотрел позвонки человека, чтобы убедиться в отсутствии шейного синдрома и остеопороза. Комитет по этике медицинского колледжа Вэньчжоу рассмотрел и одобрил исследование и отказался от необходимости получения информированного согласия.Шейный отдел позвоночника хранили при -20 ° C до подготовки и тестирования. Вся мускулатура и связки были осторожно удалены, чтобы не повредить подлежащие костные структуры.

(Gaozhi_0–200, Шанхай, Китай; точность ± 0,03 мм) и транспортир, соответствующие международным стандартам, использовались соответственно для линейных и угловых измерений. Следующие анатомические параметры были измерены непосредственно с поверхности образцов позвоночника: ширина тела позвонка (VBW), глубина тела позвонка (VBD), высота тела позвонка (VBH), ширина позвоночного канала (SCW), глубина позвоночного канала (SCD), ширина ножки (PW), глубина ножки (PD), наклон ножки (PI), ширина зубца (DW), глубина зуба (DD), общая ширина позвонка (TVW) и общая глубина позвонка (TVD) (Таблица 1, Рис. ).Размер нашей выборки соответствовал предыдущим аналогичным исследованиям [30,32,35,36]. Каждое измерение повторялось три раза двумя независимыми наблюдателями, и фиксировалось среднее значение. Все анатомические значения выражены как среднее ± стандартное отклонение (SD). Различия между колючками теленка, свиньи и человека были статистически проанализированы с использованием дисперсионного анализа (ANOVA) с последующим тестом Даннета. Значения P менее 0,05 считались значимыми.

Рис. 1. Анатомические параметры.

(VBW) ширина тела позвонка, (VBD) глубина тела позвонка, (VBH) высота тела позвонка, (SCW) ширина позвоночного канала, (SCD) глубина позвоночного канала, (PW) ширина ножки, (PH) высота ножки, ( PI) наклон ножки, (DD) глубина зуба, (DW) ширина зуба, (TVD) общая глубина позвонка и (TVW) общая ширина позвонка.

https://doi.org/10.1371/journal.pone.0148610.g001

Результаты

Верхние шейные позвонки

Отверстие позвоночной артерии вокруг атлантического позвонка голени отсутствует. По сравнению с атласным позвонком человека PI, DD и DW позвонка голени были больше, тогда как VBH и VBW были меньше. Атласный позвонок голени был подобен атлантическому позвонку человека в SCD и TVD. Зубовидный отросток позвонка голени был уникальной особенностью, и его длина и ширина были больше, чем у человека, зубчатого отростка (p <0.05) (примерно в 1,7 и 2 раза соответственно).

Тело атласа позвонка и позвоночный канал между людьми и свиньями мало отличалось, но ножки свиней были толще, чем у людей. ИП был выше в верхних шейных позвонках свиньи. DD и DW шейки матки свиньи были аналогичны таковым у людей (p> 0,05). SCD и SCW у свиней были больше, чем у людей на уровне C2 (p <0,05) (таблица 2).

Средние и нижние шейные позвонки

Углы дуг в среднем и нижнем шейных позвонках телят имели почти такие же профили, как и у людей.По сравнению с людьми, VBW и VBD шейных позвонков теленка были больше, но позвоночный канал меньше (p <0,05). Из C3 – C7 PW теленка была на 1 см меньше, чем у человека, тогда как PH была на 1 см больше. По сравнению с людьми, остистый отросток и поперечные отростки позвонков теленка были короче и горизонтальнее. От C3 до C7 разница между позвонками человека и теленка постепенно уменьшалась. C7 теленка был подобен C7 человека по VBW, PI и PW (p> 0,05).

Шейные позвонки свиней имели большие VBW, чем шейные позвонки человека, тогда как PI и SCW позвонков свиней были почти такими же, как у людей в среднем и нижнем шейных позвонках.Подобные VBD, VBH, PH и PW были обнаружены между свиньями и людьми в среднем и нижнем шейных позвонках (p> 0,05). Начиная с C3 – C7, различия в SCD между шейными позвонками свиньи и человека уменьшались. В передних отделах свиньи С4 – С6 имелось два крупных поперечных отростка (таблица S1, рис. 2–6). C7 был почти идентичен у свиней и людей.

Обсуждение

Заболевания шейки матки получили широкое распространение из-за изменений в образе жизни и окружающей среды. С развитием внутренней фиксации и хирургических методов все больше хирургов-спинальных хирургов участвуют в исследованиях шейного отдела позвоночника, тестируя новые имплантаты, методы спондилодеза и моделируя травмы.В большинстве текущих исследований используются образцы, полученные от крупных млекопитающих (например, овец [29,30] и павианов [36]), чтобы заменить образцы шейки матки человека. Различия существуют в шейном отделе позвоночника человека и таких млекопитающих, хотя все млекопитающие, использовавшиеся на сегодняшний день, обладают даже шейными позвонками. Например, бабуины ( Papio anubis ) [36], которые ходят прямо и относятся к числу ближайших родственников человека, имеют позвонки с более тонкими ножками, более длинными поперечными отростками, более выраженными унковертебральными суставами и более горизонтальными остистыми отростками, чем у людей.Однако бабуины крайне редки, и их нелегко получить для исследовательских целей. Следовательно, чтобы определить оптимальные модели на животных, мы должны оценить различия и сходства биомеханических свойств позвонков животных и человека. Кроме того, мы должны учитывать наличие видов, стоимость, способность к размножению и рост.

Телята и свиньи — четвероногие млекопитающие с относительно легко доступными шейными шипами. В настоящем исследовании мы оценивали годовалых свиней весом 60–80 кг и недельных телят весом 40–50 кг в зависимости от их подходящего размера.Aerssens [37] сравнил костный состав, плотность и механическую компетентность людей и животных и предположил, что кости свиньи наиболее сопоставимы с костями человека. Однако Aerssens [37] не сравнивал различия в морфологии. В нашем текущем исследовании этот недостаток был устранен путем предоставления подробных морфологических данных, которые могут быть использованы в будущих исследованиях.

Теленок С1-2 имел морфологию, отличную от С1-2 человека. Средний и нижний шейный отдел позвоночника теленка были достаточно большими, чтобы протестировать новые системы имплантатов; однако между позвонками теленка и человека было много различий.

Шейные позвонки свиньи и человека имели схожую анатомию, особенно верхние шейные позвонки. Атлантоаксиальный сустав (C1-2) у свиней был почти идентичен таковому у людей, особенно в отношении зубовидного отростка, который можно было использовать для имитации переломов логова и хирургических процедур. Ширина и высота шейных позвонков у свиней и людей были почти идентичны (фазовый контраст 0,1 см). Не было значительной разницы в угле ножки шейных позвонков свиньи и человека, в то время как высота и ширина ножки свиньи были немного больше.Шейный отдел позвоночника свиньи был достаточно большим для испытания транспедикулярных винтов. Самым большим различием между средними и нижними шейными позвонками свиньи и человека было наличие двух передних поперечных отростков у свиней; они были расположены в корональной области. Поперечные отростки верхнего и нижнего позвонков были связаны, что могло повлиять на их биомеханику.

В заключение, атлантоаксиальный (C1-2) сустав свиньи был анатомически идентичен атлантоаксиальному суставу человека и, следовательно, мог служить заменой человека.Между позвонками свиньи и человека существовало несколько различий в отношении позвоночного канала, тела позвонка, ножки и суставного отростка. Хотя было обнаружено, что шейные позвонки свиней имеют большое сходство с шейными позвонками человека, необходимо отметить, что свиньи обладают двумя большими поперечными отростками в переднем отделе тела C4 – C6 позвонка. Шейные позвонки свиньи были больше похожи на позвоночник человека, чем на позвоночник теленка, особенно в отношении С1, С2 и С7.

Между людьми и телятами существовало несколько различий: 1.Шейные позвонки теленка были примерно на 75% больше, чем у людей; 2. ножка голени была толще, а угол ножки больше, чем у человека; и 3. ширина и глубина зубчатой ​​кости теленка были больше, чем у человека. C7 теленка был относительно похож на C7 человека и поэтому может быть хорошей заменой.

Настоящее исследование — первое, в котором сравнивается анатомия шейных позвонков свиней, телят и людей. Мы представляем подробные и полные данные анатомической конфигурации шейных позвонков свиней и телят.При рассмотрении этих двух животных моделей в качестве заменителей экспериментов in vitro и in vivo на людях необходимо учитывать биомеханические свойства анатомии их нервных сосудов и функций в различных сегментах позвоночника.

Благодарности

Эта работа была поддержана грантами технологического офиса Qianjiang Talents Project провинции Чжэцзян (грант № 2010R10075), Фонда естественных наук провинции Чжэцзян для выдающихся молодых ученых (грант №: LR12H06001), Бюро науки и технологий Вэньчжоу City (грант №: Y20100091) и Национального фонда природы Китая (грант №81371988).

Вклад авторов

Задумал и спроектировал эксперименты: XYW HZX. Проведены эксперименты: SRS. Проанализированы данные: FMM YL. Предоставленные реагенты / материалы / инструменты анализа: YLW QAZ. Написал бумагу: SRS.

Ссылки

1. 1. Бозкус Х., Кроуфорд Н.Р., Чемберлен Р.Х., Валенсуэла Т.Д., Эспиноза А., Юксель З. и др. Сравнительная анатомия грудного отдела позвоночника свиньи и человека применительно к торакоскопическим хирургическим методам.Surg Endosc. 2005; 19: 1652–65. pmid: 16211439
2. 2. Hakalo J, Pezowicz C, Wronski J, Bedzinski R, Kasprowicz M. Сравнительное биомеханическое исследование стабилизации шейного отдела позвоночника только с помощью клетки, клетки с пластиной или пластины-клетки: модель свиньи. J. Orthop Surg (Гонконг) .2008; 16: 9–13.
3. 3. Кувенховен JW, Смит TH, ван дер Вин AJ, Kingma I, van Dieen JH, Castelein RM. Эффекты спинных и вентральных сдвиговых нагрузок на вращательную стабильность грудного отдела позвоночника: биомеханическое исследование трупов свиней и людей.Spine.2007; 32: 2545–50. pmid: 17978652
4. 4. Шмидт Р., Рихтер М., Клас Л., Пуль В., Вилке Х. Дж. Ограничения шейного отдела позвоночника свиньи при оценке имплантатов позвоночника по сравнению с шейными сегментами позвоночника человека: биомеханическое сравнение in vitro образцов шейного отдела позвоночника свиньи и человека с использованием различных инструментов. Spine.2005; 30: 1275–82. pmid: 15928552
5. 5. Тай CL, Hsieh PH, Chen WP, Chen LH, Chen WJ, Lai PL. Биомеханическое сравнение нестабильности поясничного отдела позвоночника при ламинэктомии и двусторонней ламинотомии при синдроме стеноза позвоночного канала — экспериментальное исследование на модели свиней.BMC Musculoskelet Disord, 2008; 9: 84. pmid: 18547409
6. 6. Язычи М., Пекмежи М., Цил А., Аланай А., Акароглу Е., Онер ФК. Влияние расширения ножки на морфологию ножки и биомеханическую стабильность в незрелом позвоночнике свиньи. Spine.2006; 31: E826–9. pmid: 17047529
7. 7. Yingling VR, Callaghan JP, McGill SM. (1999) Шейный отдел позвоночника свиньи как модель поясничного отдела позвоночника человека: анатомическое, геометрическое и функциональное сравнение. J Spinal Disord 12: 415–23.pmid: 10549707
8. 8. Бюшер И., Плоегмейкерс Дж. Дж., Веркерке Дж. Дж., Велдхуизен АГ. Сравнительные анатомические размеры всего позвоночника человека и свиньи. Eur Spine J.2010; 19: 1104–14. pmid: 20186441
9. 9. Бюшер И., ван дер Вин А.Дж., ван Дин Дж.Х., Кингма И., Веркерке Г.Дж., Велдхуизен АГ. Биомеханические характеристики позвоночника in vitro: сравнение сегментов позвоночника человека и свиньи. Позвоночник (Phila Pa 1976). 2010; 35: E35–42.
10. 10. Cotterill PC, Kostuik JP, D’Angelo G, Fernie GR, Maki BE.Анатомическое сравнение грудопоясничного отдела позвоночника человека и крупного рогатого скота. J. Orthop Res.1986; 4: 298–303. pmid: 3734937
11. 11. Демарто О., Пилле Л., Инаэбнит А., Боренс О., Куинн ТМ. Биомеханическая характеристика и механическое повреждение in vitro хряща головки бедренной кости пожилого человека: сравнение с хрящом головки плечевой кости взрослого крупного рогатого скота. Хрящевой остеоартрит, 2006; 14: 589–96. pmid: 16478669
12. 12. Демерс С.Н., Антониу Дж., Мвале Ф. Ценность и ограничения использования бычьего хвоста в качестве модели поясничного отдела позвоночника человека.Spine 29: 2793–9. pmid: 15599281
13. 13. Lei W, Wu Z. (2006) Биомеханическая оценка экспансивного транспедикулярного винта в позвонках голени. Eur Spine J.2004; 15: 321–6. pmid: 15864667
14. 14. Lim TH, An HS, Hong JH, Ahn JY, You JW, Eck J и др. Биомеханическая оценка передней и задней фиксации на нестабильной модели позвоночника теленка. Spine.1997; 22: 261–6. pmid:

    87

15. 15. Райли Л. Х. 3-й, Эк Джей Си, Йошида Х, Ко Ю. Д., Ю Дж. У., Лим TH. Биомеханическое сравнение моделей поясничного отдела позвоночника теленка и трупа.Spine.2004; 29: E217–20. pmid: 15167671
16. 16. Ширадо О, Здеблик Т.А., McAfee PC, Warden KE. Биомеханическая оценка методов задней стабилизации позвоночника и заднего поясничного межтелового артродеза при пояснично-крестцовом истмическом спондилолистезе. Модель позвоночника теленка. J Bone Joint Surg Am.1991; 73: 518–26. pmid: 2013591
17. 17. Wilke HJ, Krischak S, Claes L. Биомеханическое сравнение позвоночника теленка и человека. Журнал Ортоп Рес. 1996; 14: 500–3. pmid: 8676264
18. 18.Wilke HJ, Krischak ST, Wenger KH, Claes LE. Нагрузочно-смещающие свойства грудопоясничного отдела позвоночника теленка: результаты экспериментов и сравнение с известными данными на людях. Eur Spine J.1997; 6: 129–37. pmid: 9209882
19. 19. Виттенберг Р.Х., Ши М., Эдвардс В.Т., Шварц, Делавэр, Уайт А.А., 3-й, Хейс, WC. Биомеханическое исследование усталостных характеристик имплантатов грудопоясничной фиксации на модели позвоночника теленка. Spine.1992; 17: S121–8. pmid: 1631711
20. 20. Эттема А.М., Чжао С., Ан К.Н., Амадио ПК.Сравнительная анатомия подсиновиальной соединительной ткани запястного канала крысы, кролика, собаки, павиана и человека. Рука (N Y). 2006; 1: 78–84.
21. 21. Гомес М., Фриман Л., Джонс Дж, Ланц О., Арнольд П. Компьютерная томографическая анатомия венозной системы шейного отдела позвоночника собак. Vet Radiol Ultrasound, 2004; 45: 29–37. pmid: 15005358
22. 22. Грегори CR, Каллен JM, Pool R, Vasseur PB. Крестцово-подвздошный сустав собаки. Предварительное изучение анатомии, гистопатологии и биомеханики.Spine.1986; 11: 1044–8. pmid: 3576343
23. 23. Келер С.Л., Стовер С.М., ЛеКутер Р.А., Шульц К.С., Хокинс Д.А. Влияние процедуры вентральной прорези, а также штифтов с гладкой или положительной резьбой с фиксацией из полиметилметакрилата на межпозвоночную биомеханику в обработанных и смежных звеньях шейных позвонков у собак. Am J Vet Res, 2005; 66: 678–87. pmid: 15
24. 0
25. 24. Панджаби М.М., Пелкер Р., Криско Дж. Дж., Тибодо Л., Ямамото И. Биомеханика заживления травм заднего шейного отдела позвоночника на модели собаки.Spine.1988; 13: 803–7. pmid: 3194789
26. 25. Сато Ф., Янохара К., Такенучи С., Сузуки Ю., Хиса Й, Хьюга М. Механические свойства мышц гортани и биомеханика голосовой щели у собак. Ниппон Джибиинкока Гаккай Кайхо, 1982; 85: 951–6. pmid: 7143147
27. 26. Шахар Р., Милграм Дж. Биомеханика выравнивания тибиального плато в коленном суставе с дефицитом крестообразной связки: теоретическая модель. Ветеринарная хирургия, 2006; 35: 144–9. pmid: 16472294
28. 27. Такеучи Т., Абуми К., Шоно Й, Ода И., Канеда К.Биомеханическая роль межпозвоночного диска и реберно-позвоночного сустава в стабильности грудного отдела позвоночника. Исследование модели на собаках. Spine.1999; 24: 1414–20. pmid: 10423785
29. 28. Кандциора Ф., Пфлугмахер Р., Шольц М., Шнаке К., Лакке М., Шредер Р. и др. Сравнение шейного отдела позвоночника овцы и человека: анатомическое, рентгенологическое исследование, исследование минеральной плотности костной ткани и биомеханическое исследование. Spine. 2001; 26: 1028–37. pmid: 11337621
30. 29. Wilke HJ, Kettler A, Claes LE. Были ли шипы барана действительной биомеханической моделью шипов человека? Позвоночник.1997; 22: 2365–74.
31. 30. Wilke HJ, Kettler A, Wenger KH, Claes LE. Анатомия позвоночника овцы и его сравнение с позвоночником человека. Anat Rec.1997; 247: 542–55. pmid:
    94
32. 31. Зрунек М., Хаппак В., Германн М., Штрейнцер В. Сравнительная анатомия скелета гортани человека и овцы. Acta Otolaryngol.1998; 105: 155–62.
33. 32. Кумар Н., Кукрети С., Исхак М., Малхолланд Р. Анатомия позвоночника оленя и его сравнение с позвоночником человека. Анат Рек.2000; 260: 189–203. pmid: 10993955
34. 33. Kumar N, Kukreti S, Ishaque M, Sengupta DK, Mulholland RC. Функциональная анатомия позвоночника оленя: подходящая биомеханическая модель позвоночника человека? Anat Rec.2000; 266: 108–17.
35. 34. Сил Э. Х., Дэвис Э. М.. Биомеханическое сравнение кифопластики с использованием баллонного костного тампона и расширяемого полимерного костного тампона на модели позвоночника оленя. J Bone Joint Surg Br. 2007; 89: 253–7. pmid: 17322448
36. 35. Sheng SR, Wang XY, Xu HZ, Zhu GQ, Zhou YF.Анатомия позвоночника крупных животных и ее сравнение с позвоночником человека: систематический обзор. Eur Spine J.2010; 19: 46–56. pmid: 19876658
37. 36. Томинага Т., Дикман К.А., Зоннтаг В.К., Кунс С. Сравнительная анатомия павиана и шейного отдела позвоночника человека. Spine.1995; 20: 131–7. pmid: 7716616
38. 37. Aerssens J, Dequeker J, Mbuyi-Muamba JM. Состав костной ткани: биохимическая анатомия кости. Clin Rheumatol. 1994; 13: 54–62.